Нервная система в крестцовом отделе позвоночника



Болевые ощущения в нижней области спины, с ними, наверное, сталкивался каждый. Разберем, почему возникает боль, патогенные факторы, влияющие на развитие заболеваний, лечение боли в спине в области крестца.

Особенности анатомии нижнего отдела позвоночника

Крестцовый отдел позвоночника имеет достаточно сложную структуру, все элементы должны работать слаженным механизмом, при малейшем нарушении одной из составляющих сбой получает вся система. Органеллы, которые входят в состав:

• Массивные позвонки, в количестве пяти штук;
• Непосредственно крестец;
• Копчик;
• Связочно-мышечная система прилегающих областей (ягодичная область, нижний отдел спины);
• Развитая сосудистая сеть;
• Нижний спиномозговой отдел.

Сложные анатомические особенности подкрепляются высоким уровнем нагрузки, так как этому отделу позвоночника приходится удерживать основную массу мышц и нагрузку из иных отделов позвоночника. Стоит тщательно следить за тем, чтобы здоровье позвоночника было в норме.

Факторы патологического воздействия:

• Низкая физическая активность;
• Ненормированная нагрузка, с акцентом на подъем тяжеловесных грузов;
• Нарушены правила ходьбы и осанки;
• Дефекты, связанные с врожденными аномалиями костной или мышечной системы;
• Нарушена амортизация стопы, вызванная деформацией;
• Лишний вес;
• Врожденная хрупкая хрящевая ткань;
• Различного рода травмы в области поясницы или крестца;
• Инфекционные болезни;
• Иные системные заболевания (сердечно-сосудистой, системы пищеварения, эндокринологические болезни);
• Болезни суставов;
• Гормональный дисбаланс;
• Ненормированный рабочий график, постоянное недосыпание, стрессовые состояния, частые переохлаждения;
• Несоблюдение основ рационального питания;
• Изменения, которые приходят с возрастом.

При воздействии одного или нескольких факторов в комплексе в организме возникают дегенеративные изменения, которые влекут за собой возникновение патологического процесса – болезни.

Самые распространенные заболевания нижнего отдела позвоночника

1. Остеохондроз занимает лидирующую позицию среди прочих заболеваний. Это заболевание влечет за собой необратимые изменения непосредственно в межпозвоночных дисках. Восемьдесят процентов обращений к врачу вызваны именно этим заболеванием. Периоды обострения способны «выбить» из рабочего процесса пациента на достаточно длительный срок.
2. Вовремя не взятый на вооружение остеохондроз способствует включению в процесс сосудистой сети. Такие изменения затрагивают связочно-суставную систему. Весь этот комплекс называется «спондилез» – процесс, при котором происходит разрушение костной ткани, чаще всего затрагивает и переходит на последующие позвонки.

Комплекс лечебных мероприятий

Существует достаточно большое количество разных методов лечения заболеваний пояснично-крестцового отдела позвоночника. Лучше всего подходить к терапии комплексно. Рассмотрим ряд методов по категориям, которые будут способствовать скорейшему выздоровлению:

1. Медикаментозное лечение. Используют препараты следующих фармакологических групп:

• Для снятия болевого синдрома – анальгетики;
• Устранение мышечной спастики – миорелаксанты;
• Нестероидные противовоспалительные.

2. Курс массажей. Во время сеанса массажист работает с прилегающими тканями, улучшая их трофику и отток от пораженной. Используют мягкие мануальные техники.

3. Работа с мануальным терапевтом. Данный метод отличается высокой успешностью и скорейшему выздоровлению. Снижается болевой синдром, уходит скованность, появляется гибкость, заболевание постепенно отступает.

4. Средства народной медицины (компрессы, мази).

Какой бы развитой ни была медицина, заболевание легче предупредить, не доводя до похода к врачу. Стоит придерживаться простых правил: нормировать рабочий день, высыпаться, следить за поступлением в организм витаминов и микроэлементов, заниматься физическими упражнениями и, главное, все делать все осознанно. Только тогда ваше здоровье и спина будут радовать вас многие годы.

Автор: К.М.Н., академик РАМТН М.А. Бобырь

Читайте так же

• 

  Алексей

  2013-12-23 07:08:08

  Мне 40 лет. В клинику Бобыря меня привела боль в пояснице. Очень долго я ее терпел, но потом стало даже ходить трудно, простреливало в ногу. В день моего первого визита к Михаилу Анатольевичу так «скрутило», что и пошевелиться не мог. Как выяснилось позже, у меня межпозвонковая грыжа аж 9 мм,… Читать дальше

• 

  Ирина

  2019-10-24 16:43:01

  Ходила на прием в доктору Сорокину с болями в спине правой части под лопаткой, 4 сеанса и про спину забыла. Вот теперь пойду с шеей, остеохондроз 2 степени опять к нему. Надеюсь,т.к. на враче из простых клиник нет надежды, только лекарствами и физиотерапией какой то бесполезной пичкают . Читать дальше

• 

  Анелия

  2019-02-16 09:55:33

  Хочу выразитть благодарность массажисту-реабилитологу Иксанову Руслану это мастер своего дела. Он видит руками четко знает и делает свое дело. Благодарю и желаю успехов во всех сферах его жизни. Рекомендую всем у кого проблема с позвоночником . 16.02.2019 год Читать дальше

• 

  Татьяна

  2019-04-26 21:45:46

  Выражаю огромную благодарность Доктору с большой буквы Бобырю Михаилу Анатольевичу. Доктор своими золотыми руками координально поменял мою жизнь. Болею много лет, прооперирована по поводу грыжи диска поясничного отдела в 1987 году. Все это время лечилась в разных клиниках с переменным успехом…. Читать дальше

Врачи клиники Бобыря стаж работы от 10 лет

Источник

В течение столетия считалось, что черепные и крестцовые висцеральные нервы позвоночника – родственные образования. Согласно этому, крестцовые преганглионарные нейроны, как и ганглии, расположенные в области малого таза и контролирующие функции прямой кишки, мочевого пузыря, половой системы, считаются парасимпатическими. В этой публикации раскрываются 15 фенотипических и онтогенетических особенностей, которые отличают пре- и постганглионарные нейроны краниального отдела парасимпатической системы от симпатических нейронов грудопоясничного отдела у мышей. Каждая из особенностей доказывает, что крестцовый отдел неотличим от грудопоясничного. Таким образом, парасимпатическая нервная система получает импульсы исключительно от черепных нервов, а симпатическая нервная система от спинномозговых, в том числе от торакальных и крестцовых. Это упрощенное, двухкомпонентное строение, предлагает новую концепцию нейрофизиологии тазового дна, а также эволюции и развития вегетативной нервной системы.

Видео S1.

Тазовый ганглий дикого типа на 11-12 день эмбрионального развития. Тазовый нерв (окрашен зеленым) достигает ростально-дорсального и латерального краев тазового ганглия (экспрессирующего Phox2b, окрашен красным), большинство клеток которого лежат дистально и медиально по отношению к этим краям.

Отнесение крестцового отдела к парасимпатической вегетативной нервной системе – как и связь черепного отдела с крестцовым – имеет древнюю, хотя и простую историю: это убеждение, уходящее корнями в работу Уолтера Гаскелла [1], было документально оформлено Лэнгли [2], и с тех пор стало общепринятым [3]. Аргументом послужили некоторые сходства крестцового отдела с краниальным: (I) анатомическое – область иннервации, в отличие от грудопоясничного отдела, менее рассеяна, отличается от него отсутствием иннервации конечностей, а также недостатком проекций на паравертебральный симпатический ствол [1] (II); физиологическое – влияние на некоторые органы противоположно грудопоясничному отделу [4]; и (III), фармакологическое – повсеместная чувствительность к антагонистам мускариновых рецепторов [2]. Однако, не хватало анализа клеточного фенотипа. В этой статье исследователи определили дифференциальные генетические признаки и взаимосвязи парасимпатических и симпатических нейронов, как пре-, так и постганглионарных. Когда они рассмотрели крестцовый отдел вегетативной нервной системы мышей с такого ракурса, то обнаружили, что его лучше отнести к симпатической, а не к парасимпатической системе.

Черепные парасимпатические преганглионарные нейроны образуются в прогениторной области заднего мозга “pMNv”[5], экспрессирующей гомеоген Phox2band и, ко всему прочему, формирующей бранхиомоторные нейроны [6]. Постмитотические предшественники мигрируют дорсально [7] с образованием ядер (таких как дорсальное двигательное ядро блуждающего нерва) и через дорсолатеральные точки выхода выступают в качестве ветвей некоторых черепных нервов, иннервирующих парасимпатические и энтеральные ганглии. В противоположность этому, симпатические преганглионарные нейроны грудного и верхнего поясничного отдела (далее просто “грудного”), предположительно, имеют общее происхождение с соматическими мотонейронами [8, 9]. Подразумевается, что они образуются в прогениторной области pMN (дорсальнее р3) – то есть из прогениторных клеток, которые экспрессируют основной фактор транскрипции OLIG2 типа спираль-петля-спираль (bHLH) [10]. Симпатические преганглионарные предшественники затем отделяются от соматических мотонейронов, формируя интермедиолатеральный столб у млекопитающих [11], затем вступают в вентральные корешки спинномозговых нервов вместе с аксонами соматических мотонейронов, и с помощью белых соединительных ветвей образуют синапсы на нейронах паравертебральных и превертебральных симпатических ганглиев.

Исследователи стремились сравнить генетический состав и взаимосвязи нижних поясничных и крестцовых преганглионарных нейронов (ниже просто “крестцовых”) с черепными (парасимпатическими) и грудными (симпатическими). В качестве представителя черепных преганглионарных нейронов они избрали дорсальное двигательное ядро блуждающего нерва, скопление нейронов, заметное уже на 13-14 день эмбрионального развития (E13.5) и экспрессирующее везикулярный переносчик ацетилхолина (VAChT) (рис. 1В). Грудные и крестцовые преганглионарные нейроны, которые образуют медиолатеральный столб спинного мозга, несмотря на их возможную холинергическую природу на данном этапе не экспрессируют VAChT. Для того, чтобы определить их локализацию, был использован общий маркер – синтаза оксида азота (NOS) [12] (рис.1, A и B), который отсутствовал в дорсальном двигательном ядре блуждающего нерва на E13.5 (рис.1В) или позже. Таким образом, экспрессия NOS характерна для грудных и крестцовых, но не для черепных преганглионарных нейронов.

Рис. 1. Крестцовые преганглионарные нейроны развиваются также, как симпатические нейроны, а не парасимпатические.

(A) Продольный толстый срез спинного мозга, прореагировавший на восстановленную активной диафоразой форму НАДФ, указывает на экспрессию NOS, демонстрируя, что грудной и крестцовый висцеромоторные столбы (указаны стрелками) разделены промежутком (от B до K). Поперечные срезы на E13.5 пересекающие правую половину продолговатого мозга (левый столбец в левой и правой панелях), грудного отдела спинного мозга (средний столбец) и крестцового отдела спинного мозга (правый столбец), окрашены указанными антителами и “молекулярными” зондами, либо экспрессируют NOS, генетический фон указан справа (B). Дорсальное двигательное ядро блуждающего нерва (nX) экспрессирует VAChT, но не NOS, в то время как грудные и крестцовые преганглионарные нейроны (указаны стрелками) экспрессируют NOS, но не VAChT. Вентрально расположенные соматические мотонейроны, в том числе ядра подъязычного нерва (nXII) в заднем мозге, экспрессируют VAChT. [(C) и (D)] Phox2b (С) и Phox2a (D) экспрессируются в nX, но не обнаруживаются ни в грудных, ни в крестцовых преганглионарных нейронах (указано стрелками). Нижние панели в (С) и (D): множество преганглионарных нейронов. (E) Нейроны nХ, к которым не относятся ни грудные, ни крестцовые преганглионарные нейроны (меченные антителом к ​​Islet1/2, белые стрелки), происходят из предшественников Phox2b+, постоянно заметных на фоне Phox2b::Cre;RosatdT. (F) Нейроны nХ отсутствуют после нокаутирования Phox2b (красные стрелки), но грудные и крестцовые преганглионарные нейроны остаются (черные стрелки). (G) Нейроны nX остались после нокаутирования OLIG2 (черные стрелки), но грудные и сакральные преганглионарные нейроны отсутствуют (красные стрелки). Нейроны nXII также отсутствуют, чего и следовало ожидать от соматического двигательного ядра (красная стрелка). (От Н до J) Tbx20, Tbx2 и Tbx3 экспрессируются во всех или в большинстве нейронов nX (стрелки в панелях левого столбца), но не обнаружены в грудных или крестцовых преганглионарных нейронах (стрелки в панелях среднего и правого столбцов). (K) Foxp1 не экспрессируется в nХ (стрелка в левом столбце), но является маркером как грудных, так и крестцовых преганглионарных нейронов (стрелки в среднем и правом столбцах). nTS – ядро ​​одиночного тракта. Масштаб: 1 мм (A), 100 μm [от (В) до (К)].

В отличие от черепных (парасимпатических) преганглионарных нейронов, грудные (симпатические) преганглионарные нейроны не только не экспрессируют Phox2b или его паралог Phox2a на E13.5, но также образуются из Phox2b-негативных прогениторов, а вместо Phox2b их дифференцировка (рис. 1, от C до F, левый и средний столбцы) зависит от OLIG2 (рис. 1G). Крестцовые преганглионарные нейроны в этом плане схожи с грудными (рис. 1, от С до G, средний и правый столбцы). На E13.5, экспрессия факторов транскрипции Tbx20, Tbx2 и Tbx3 семейства T-box была выражена в черепных (парасимпатических) нейронах, но отсутствовала как в грудных (симпатических), так и в крестцовых преганглионарных нейронах (рис. 1, от Н до J). Фактор транскрипции Foxp1 семейства F-box – определяющий фактор преганглионарных нейронов грудного отдела [13] – экспрессировали крестцовые, но не черепные преганглионарные нейроны (рис. 1К). Различия в экспрессии Phox2b, Tbx20 и FoxP1 между черепными и всеми спинномозговыми преганглионарными нейронами грудного и крестцового отделов, также наблюдается на E16.5. В целом, онтогенез и транскрипционные характеристики крестцовых преганглионарных нейронов были неотличимы от грудных, а, следовательно, и от симпатических нейронов.

Рис. 2. Все клетки тазового ганглия имеют симпатические, а не парасимпатические, транскрипционные сигнатуры.

Сагиттальные срезы пересекающие парасимпатические ганглии (столбцы, озаглавленные «парасимпатические»), поясничный паравертебральный симпатический столб (столбцы, озаглавленные «симпатический») и тазовый ганглий (столбцы, озаглавленные «тазовый») на E13.5, окрашенные с помощью иммуногистохимии для выявления Phox2b, маркера всех вегетативных ганглиев (31). Выполнена гибридизация in situ для индикации “молекулярных” зондов. GG – коленчатый ганглий (каниальный чувствительный ганглий); O – ушной ганглий; S – крылонёбный ганглий; SM – подчелюстной ганглий (все парасимпатические ганглии).

Грудные и крестцовые преганглионарные нейроны располагаются в медиолатеральной области спинного мозга, их аксоны выходят вентрально, в то время как топография черепных преганглионарных нейронов менее систематизирована, а их аксоны выходят дорсально. Эти сходства крестцового отдела с грудным, а также их отличия от краниального противоречат представлению о краниосакральном сходстве с момента его первого описания [1].

Крестцовые преганглионарные нейроны проводят импульс в тазовое сплетение и считаются парасимпатическими [14]. Поскольку часть тазовых ганглионарных нейронов получает импульсы от верхних поясничных (частично исследовались на крысах [15]) и, следовательно, от симпатических преганглионарных нейронов, тазовый ганглий считается смешанным – симпатическим и парасимпатическим [16]. Такое определение представляет проблемой для клетки, которые получают двойную иннервацию от поясничного и крестцового отделов [17]. Симпатическая идентичность грудных и крестцовых преганглионарных нейронов, которая раскрывается в этой публикации, лишает этот вопрос актуальности. Несмотря на это, учёные искали свойственный клеткам критерий, который бы подтвердил симпатический характер всех тазовых ганглионарных клеток, в генах, экспрессия которых различна в симпатических ганглионарных клетках в отличие от парасимпатических нейронов в любом другом месте вегетативной нервной системы. Нейромедиаторные фенотипы не соответствуют симпатическому или парасимпатическому отделам вегетативной системы, поскольку холинергические нейроны тазового ганглия включают в себя как «парасимпатические», так и «симпатические» ганглионарные клетки, как это определено их взаимосвязью [14], а истинные симпатические нейроны паравертебрального ствола являются холинергическими [18]. Тем не менее, исследователи обнаружили, что три фактора транскрипции, которые в обязательном порядке экспрессируются в симпатоадреналовой системе – Islet1, Gata3 и Hand1 – не выявлялись в таких парасимпатических ганглиях, как в крылонебные, подчелюстные или ушные (рис. 2), [хотя Islet1 экспрессируется в реснитчатом ганглии, а Gata3 в сердечных ганглиях, которые, таким образом, отклоняются от каноничной парасимпатической молекулярной сигнатуры]. С другой стороны, было обнаружено, что два паралогичных гомеобоксных гена Hmx2 и Hmx3 являются специфическими маркерами всех парасимпатических ганглиев, в отличие от симпатических ганглиев и мозгового вещества надпочечников (рис. 2). Все клетки тазового ганглия были Islet1+, Gata3+, Hand1+, Hmx3- и Hmx2- на E13.5 (рис. 2) и га E16.5 (рис. S8), равно как и меньшие отдельные ганглии тазовых органов (рис. S8). Таким образом, все они имели симпатическую транскрипционную сигнатуру. Кроме того, ганглий Ремака у кур, который классически считался парасимпатическим, отобразил Islet1+, Hand1+, Hmx3- сигнатуры, и, соответственно, оказался симпатическим.

Рис. 3. Тазовый ганглий формируется независимо от нерва, как симпатические, а не как парасимпатические ганглии (А и С).

На E11.5 тотальный препарат, окрашенный с помощью иммунофлюоресценции индикаторными антителами, как гетерозиготного (А), так и гомозиготного эмбриона с нулевой мутацией Olig2 (C). Зарождающиеся тазовые нервы [желтая стрелка в (A)], кажется, происходят на этой стадии в основном из нерва L6. При нулевой мутации Olig2 (C) остаются два тонких сенсорных тазовых отростка. Тазовый ганглий (PG) лежит впереди большинства волокон как у гетерозиготного, так и у мутантного эмбриона. (В и D). На изображении нерва L6, покрытого Sox10+ клетками, отсутствуют Phox2b+ клетки (желтые стрелки), что отличает его от черепно-мозговых нервов, которые дают начало парасимпатическим ганглиям на той же стадии [нерв Якобсона в (Е)]. (F и G) На Е13.5 гибридизация in situ для выявления Phox2b и иммуногистохимия для определения нейрофиламентов (NF) у гетерозигот и гомозигот с нокаутированным OLIG2, в то время, как парасимпатические ганглии образуются в других частях тела. Диаграмма: тазовый ганглий имеет тот же объем, несмотря на наличие [черная стрелка в (F)] или отсутствие преганглионарного нерва (6369 μm3 ± 1066 по сравнению с 6441 μm3 ± 919, P = 0.96, n = 5 эмбрионов). gt – генитальный бугорок; L5 и L6 – 5 и 6 поясничные корешки; S1 – первый крестцовый корешок; SC – симпатический столб.

Наконец, опираясь на различия в режимах развития симпатических и парасимпатических ганглиев был проверен тазовый ганглий. Парасимпатические ганглии, в отличии от симпатических, возникают в результате миграции предшественников шванновских клеток Sox10+/Phox2b+ вдоль их будущего преганглионарного нерва по направлению к месту формирования ганглия и не образуют его, если эти нервы отсутствуют [24, 25]. На E11.5 пояснично-крестцовое сплетение, которое дает начало тазовому нерву, распростерло волокна, которые достигли бокового и рострального краев зачатка тазового ганглия и большинство из которых уже расположилось далеко впереди него (рис. 3А и видео S1). Эти волокна были покрыты клетками, экспрессирующими Sox10+, но (рис. 3B), в отличие от черепно-мозговых нервов, которые образуют парасимпатические ганглии на той же стадии, но не экспрессируют Phox2b (рис. 3E). Удаление всех моторных волокон у OLIG2-/- эмбрионов оставило только два тонких, предположительно, сенсорных, выступа от крестцового сплетения (рис. 3C), а также сильно уменьшило количество клеток с Phox2b+ (рис. 3D и рис. S10). Несмотря на эту массовую атрофию, тазовый ганглий оказался интактен (рис. 3C видео S2). Это было количественно проверено на E13.5 (рис. 3, F и G).

Рис. 4. Новый взгляд на анатомию вегетативной нервной системы.

Эфферентный путь вегетативной нервной системы состоит из симпатической системы спинного мозга (слева, красный цвет) и краниальной парасимпатической системы (справа, синий цвет). Мишенями симпатической системы в коже, кроме артерий, являются мышцы поднимающие волосы и потовые железы. III – глазодвигательный нерв; VII – лицевой нерв; IX – языкоглоточный нерв; X – блуждающий нерв; A.M. – мозговое вещество надпочечников; gg – ганглий; Pulm – легочный; SCG – верхний шейный ганглий; Sph – крылонёбный; Smb – подчелюстной.

Хотя на 50% это клетки постганглионарного тазового нерва, тазовый ганглий формируется раньше и независимо от нерва, как и подобает симпатическому ганглию, а не парасимпатическому. Таким образом, крестцовый отдел вегетативной нервной системы является нижним форпостом симпатического отдела (рис. 4), а сама вегетативная нервная система разделена на краниальную и спинальную части, в соответствии с определенными эволюционными теориями [26]. Это новое понимание анатомии учитывает многие данные, которые противоречили предыдущим. Например, хотя обычно схемы представляют крестцовый путь к прямой кишке как дисинаптический, т.е. вагус-подобный [3], на самом деле он преимущественно [27, 28] трисинаптический, т.е. симпато-подобный [29]. Несмотря на догму об антагонизме между поясничным и крестцовым отделами, проявляющемся действием на мышцу-детрузор мочевого пузыря, в эксперименте торможение поясничного отдела отсутствует [4] или имеет сомнительную функциональную значимость [30]. Синергизм поясничного и крестцового отделов, проявляющийся расширением сосудов во внешних половых органах [29] показывает преемственность действия, а не антагонизм, как предлагает старая модель нервных импульсов грудопоясничного и крестцового отделов.

Симпатическая идентичность всех крестцовых и тазовых вегетативных нейронов, которую раскрывают новые данные, представляет собой основу для открытий в области нейроанатомии и физиологии таза.

Видео S2.

Тазовый ганглий на а 11-12 день эмбрионального развития у мутантных мышей с нулевой мутацией Olig2. В отсутствие мотонейронов рудиментарный тазовый нерв, состоящий исключительно из чувствительных волокон, едва касается тазового ганглия (экспрессирующего Phox2b, окрашен красным), который имеет тот же вид и размеры, что и у эмбрионов дикого типа (смотрите видео S1).

Дополнительные материалы к статье

Источники

1. W. H. Gaskell, J. Physiol. 7, 1-80.9 (1886).
2. J. N. Langley, The Autonomic Nervous System: Part I (W. Heffer, Cambridge, 1921).
3. E. Kandel, J. Schwartz, T. Jessell, S. Siegelbaum, A. J. Hudspeth, Principles of Neural Science, Fifth Edition (McGraw-Hill Professional, 2012).
4. J. N. Langley, H. K. Anderson, J. Physiol. 19, 71-139 (1895). 5. J. Briscoe et al., Nature 398, 622-627 (1999).
5. A. Pattyn, M. Hirsch, C. Goridis, J. F. Brunet, Development 127, 1349-1358 (2000).
6. S. Guthrie, Nat. Rev. Neurosci. 8, 859-871 (2007).
7. Prasad, M. Hollyday, J. Comp. Neurol. 307, 237-258 (1991).
8. A. Markham, J. E. Vaughn, J. Neurobiol. 22, 811-822 (1991).
9. W. A. Alaynick, T. M. Jessell, S. L. Pfaff, Cell 146, 178-178.e1 (2011).
10. P. E. Phelps, R. P. Barber, J. E. Vaughn, J. Comp. Neurol. 330, 1-14 (1993).
11. C. R. Anderson, Neurosci. Lett. 139, 280-284 (1992).
12. J. S. Dasen, A. De Camilli, B. Wang, P. W. Tucker, T. M. Jessell, Cell 134, 304-316 (2008).
13. J. R. Keast, Int. Rev. Cytol. 248, 141-208 (2006).
14. J. R. Keast, Neuroscience 66, 655-662 (1995).
15. Kuntz, R. L. Moseley, J. Comp. Neurol. 64, 63-75 (1936).
16. W. C. De Groat, A. M. Booth, J. Krier, in Integrative s of the Autonomic Nervous System, C. M. Brooks, K. Koizumi, A. Sato, Eds. (University of Tokyo Press, Tokyo, 1979), pp. 234-245.
17. U. Ernsberger, H. Rohrer, Cell Tissue Res. 297, 339-361 (1999).
18. K. Huber et al., Dev. Biol. 380, 286-298 (2013).
19. K. Tsarovina et al., Development 131, 4775-4786 (2004).
20. E. Doxakis, L. Howard, H. Rohrer, A. M. Davies, EMBO Rep. 9, 1041-1047 (2008).
21. L. Huber, M. Ferdin, J. Holzmann, J. Stubbusch, H. Rohrer, Dev. Biol. 363, 219-233 (2012).
22. C. L. Yntema, W. S. Hammond, J. Exp. Zool. 129, 375-413 (1955).
23. V. Dyachuk et al., Science 345, 82-87 (2014).
24. Espinosa-Medina et al., Science 345, 87-90 (2014).
25. S. Nilsson, in Autonomic Nerve in the Vertebrates, Zoophysiology, vol. 13, D. S. Farner, Ed. (Springer-Verlag, New York, 1983), chap. 2.
26. C. Olsson et al., J. Comp. Neurol. 496, 787-801 (2006). 28. K. Fukai, H. Fukuda, J. Physiol. 362, 69-78 (1985).
27. W. Jänig, The Integrative Action of the Autonomic Nervous System: Neurobiology of Homeois (Cambridge Univ. Press, Cambridge, UK, 2006).
28. W. C. de Groat, W. R. Saum, J. Physiol. 220, 297-314 (1972).
29. A. Pattyn, X. Morin, H. Cremer, C. Goridis, J. F. Brunet, Nature399, 366-370 (1999).

Нашли опечатку? Выделите фрагмент и нажмите Ctrl+Enter.

Источник